厦门免费医学论文发表-2017-2022 年大韩民国蚊子中日本脑炎病毒 （JEV） 的遗传转移
云宝拉，权智英，诺炳恩，赵世勋，郭东美 ，李熙一
抽象
背景
日本脑炎病毒（JEV）通过蚊子传播，在亚洲、西太平洋和世界其他地区传播。根据包膜 （E） 基因的核苷酸序列将其分为五种基因型 （GI-GV）。尽管进行了广泛的监测，但基因型分布和蚊子种类的变化仍然没有得到充分报告，特别是在大韩民国。
方法/主要结论
我们在 2017 年至 2022 年期间进行了全国范围内的蚊子采集，从全国 32 个地点捕获了 1,102,031 只蚊子。主要种类为伊蚊（34.2%）、库蚊（17.9%）、三纹伊蚊（13.4%）、白纹伊蚊（4.0%）和东方伊蚊（0.6%）。在49个池中检测到日本脑炎，其中大部分来自Cx. pipiens和Cx. tritaeniorhynchus。遗传分析确定了基因型 I、III 和 V，从 2020 年起基因型 V 变得占主导地位。
结论/意义
基因型 V 作为日本脑炎病毒的主要菌株的出现，以及它在先前已知的 Cx. tritaeniorhynchus 以外的蚊子物种中检测到，凸显了持续监测的必要性。这些发现强调了开发对所有日本脑炎病毒基因型有效的疫苗以减轻公共卫生风险的重要性。
作者总结
日本脑炎病毒（JEV）是一种蚊媒人畜共患病毒，属于黄病毒科，正黄病毒属，可引起人类严重脑炎，导致严重的发病率和死亡率。日本脑炎病毒主要通过受感染的雌性库蚊叮咬传播，可分为五种不同的基因型（GI-GV），这些基因型与包膜基因序列密切相关。人们对这些基因型在大韩民国 （ROK） 的进化、地理分布和流行病学及其对公共卫生的潜在影响知之甚少。为了弥补这一知识差距，我们分析了蚊子种群的时空分布，并调查了 2017 年至 2022 年韩国日本脑炎病毒基因型的流行病学。虽然 Cx. tritaeniorhynchus 在亚洲、西太平洋和其他地区被广泛认为是日本脑炎病毒的主要媒介，但本研究中在几种蚊子中检测到基因型 V （GV） 表明媒介动力学存在潜在变化。此外，这些发现表明，GV 在 1952 年在马来西亚首次被隔离后，可能在亚洲国家重新出现。因此，加强JEV检测的媒介监测势在必行，并开发更有效的基因型V型相关日本脑炎诊断工具势在必行。
数字
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引文： Yun BR， Kwon JY， Noh BE， Cho S， Kwak D， Lee HI （2025） 2017-2022 年韩国蚊子体内日本脑炎病毒 （JEV） 的遗传变化。PLoS Negl Trop Dis 19（7）： e0013258。 https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013258
编辑 器： Gordana Rasic，QIMR：QIMR Berghofer 医学研究所，澳大利亚
收到： 2024 年 10 月 22 日;接受： 2025 年 6 月 17 日;发表： 7月 17， 2025
版权所有： © 2025 Yun et al.这是一篇根据知识共享署名许可条款分发的开放获取文章，该许可允许在任何媒体上不受限制地使用、分发和复制，前提是注明原作者和来源。
数据可用性： 所有数据都在手稿和/或支持信息文件中。
资金： 作者没有获得这项工作的具体资金。
利益争夺： 作者已声明不存在相互竞争的利益。
介绍
日本脑炎 （JE） 是一种蚊媒人畜共患疾病，可导致人类严重脑炎，脑炎患者的死亡率很高，幸存者会出现长期神经系统后遗症。虽然大多数成人感染无症状，但儿童和老年人特别容易受到感染，严重病例的死亡率约为 30% [2]。尽管采取了疫苗接种措施，但日本脑炎在亚洲仍然是一个重大的公共卫生问题，包括韩国 （ROK），自 1946 年以来，该国已记录到定期爆发疫情。病例数随着时间的推移而波动，但最近的数据表明稳步增加，这引发了人们对这种疾病在该地区再次出现的担忧 [3–6]。
日本脑炎病毒 （JEV） 是日本脑炎的病原体，在涉及库蚊和动物（如猪和鸟类）的循环中维持。该病毒属于黄病毒科，具有编码结构蛋白和非结构蛋白的基因组。JEV 分为五种基因型 （GI-GV），主要基于包膜基因的核苷酸序列。该病毒在亚太地区流行了近一个世纪 [7]。传播给人类主要通过受感染的雌性 Culex tritaeniorhynchus 蚊子叮咬发生。然而，在东亚，几种蚊子，包括Cx. tritaeniorhynchus、Cx. pipiens complex、Cx. vishnui、Cx. orientalis和伊蚊属，被认为是重要的JEV媒介，其中许多是韩国本土的[1,8–20]。在过去的三十年里，以前在许多亚洲国家占主导地位的基因III型（GIII）在很大程度上已被基因I型（GI）所取代[21,22]。然而，在韩国，1952年在马来西亚首次分离出基因型V（GV）的检测引起了人们对当前基于GIII的疫苗对新出现的毒株的疗效的担忧[23]。在韩国，2015年和2018年在疑似日本脑炎患者的脑脊液样本中检测到JEV GV[6,24]。JEV GV于2010年首次在韩国的蚊子中发现，特别是在Culex bitaeniorhynchus [25]，此后又在多个蚊子物种中发现[13,14,24]。
尽管对蚊子中 JEV 的监测正在进行中，但关于不同 JEV 基因型在韩国的分布及其对公共卫生的潜在影响的数据有限。本研究通过报告蚊子种群的时空分布和调查 2017 年至 2022 年韩国 JEV 基因型的流行病学来解决这一差距。
材料和方法
蚊子采样
2017 年至 2022 年 3 月至 11 月期间，韩国 15 个省份进行了例行蚊虫监测。采样地点包括首尔 （SO）、仁川 （IC）、江原道 （GW） 和京畿道 （GG） 的城市地区、农村地区、畜棚和候鸟栖息地;中部地区的忠清北道 （CB）、忠清南道 （CN）、庆尚北道 （GB）、全罗北道 （JB）、大田 （DJ） 和大邱 （DG）;南部地区的庆尚南道 （GS）、全罗南道 （JN）、釜山 （BS） 和光州 （GJ）;济州岛 （JJ） 是最南端的岛屿（图 1）。
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图 1. 2017 年至 2022 年韩国传播日本脑炎病毒 （JEV） 的主要蚊子物种的地理分布 （a） 三种蚊子的总体分布。
（b） Cx. tritaeniorhynchus， （c）， Cx. pipiens complex， （d） Cx. orientalis.Base Layer 图像来源于 GADM（https://gadm.org/maps.html）。映射颜色表示陷阱索引（0 到 >100），收集陷阱由绿点表示。诱捕器指数表示每晚每个诱捕器的蚊子数量。首尔 SO;IC，仁川;GG，京畿道;GW，江原道;CB，忠北;CN， 忠南道;GB，庆尚北道;GN，庆尚南道;DJ，大田;DG，大邱;GJ，光州;BS，釜山;JB，全北;JN，全南;JJ，济州岛。
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使用四种类型的诱捕器收集蚊子：干冰诱饵黑光诱捕器（The John W. Hock Co.，美国佛罗里达州盖恩斯维尔），BG-Sentinel 诱捕器（BioGents，雷根斯堡，德国），LED 诱捕器（UV-LED Blackhole Plus 蚊子诱捕器;Biotrap Co.， Ltd.， Gyeonggi， ROK） 和 CO2- 诱饵数字蚊子监测系统 （DMS;E-TND Co.， Ltd.， 京畿道，韩国）。每月进行两次采集。为了评估蚊子密度，计算了诱捕器指数 （TI）——每晚每个诱捕器收集的雌性蚊子的平均数量。
蚊属的形态学鉴定
收集到的蚊子被装在装满干冰的冷藏箱中运送到实验室。将它们固定在冰室中后，使用立体显微镜（Olympus-SZ61;Tokyo， Japan）和标准分类键[26]。将鉴定出的标本储存起来，用于随后的分子分析，以检测 JEV 的存在。
RNA 提取
蚊子按物种、收集时间和地点进行分组，每个池包含最少 1 只到最多 30 只蚊子。将样品储存在 -80 °C 直至提取 RNA。为了使蚊池均质化，加入玻璃珠，并在 RLD 缓冲液（货号。IN1003，Invirustech，韩国光州）使用 Precellys Evolution 均质器（Bertin Technologies，法国布列托讷）以 7,500 rpm 的速度进行两个 30 秒的循环。使用 Clear-S 提取病毒 RNATM总 RNA 提取试剂盒（货号IVT7001，Invitrogen，韩国）根据制造商的说明。然后将 RNA 样品等分并储存在 -80 °C 下进行逆转录 （RT） 步骤。
蚊子体内 JEV 的分子检测
使用逆转录聚合酶链反应 （RT-PCR） 对提取的 RNA 进行 JEV 检测，以靶向非结构蛋白 5 （NS5） 基因。Clear-MD 黄病毒实时 RT-PCR 检测试剂盒（货号。IVT-M1001KS，Invirustech，韩国）用于此目的。RT-PCR 循环条件包括在 45 °C 下进行 RT 步骤，持续 10 分钟进行 cDNA 合成，然后在 95 °C 下进行灭活步骤，持续 10 分钟。随后，进行了 40 个扩增循环，包括 95 °C 下 10 秒的变性、60 °C 下的 15 秒退火、72 °C 下的 10 秒延伸和 80 °C 下的 15 秒信号读数。 反应完成后，将样品冷却至 25 °C 以稳定反应产物。实时 RT-PCR 后，通过设置适当的阈值来分析结果。如果阈值循环 （Ct） 值小于 40 且熔解温度范围为 82 °C 至 88 °C，则认为样品为阳性，通过扩增图和熔解曲线分析确定。NS5 基因的预期扩增子大小约为 250 bp。最低感染率 （MIR） 计算如下：
MIR = 阳性蚊子池的数量/检测× 1000 只蚊子总数。
通过自动毛细管电泳 （QIAxcel Advanced System;Qiagen， Hilden， Germany） 并通过 Sanger 测序进行测序。序列以 PQ121414-PQ121433 的登录号存入 GenBank。
系统发育分析
使用 MEGA 11.0 版对获得的序列进行校对和修剪。和 Finch TV Chromatogram Viewer ver. 1.3.1 （Geospiza， Inc.）。使用 GenBank 中的 BLAST 工具评估序列身份 （https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi）。对所有蚊池进行了 JEV 检测，并使用阳性样本来推断蚊子物种与 JEV 基因型之间的潜在关联。与 GenBank 数据库中已发表的来自人类和蚊子的 JEV 毒株序列进行了系统发育比较。系统发育树是使用 MEGA 11.0 中的邻居连接方法构建的，应用 Jukes 和 Cantor 距离模型。用 1,000 个 bootstrap 重复评估树的稳健性。
地理和统计分析
地理分布地图是使用 ArcGIS 版本 10.2 中空间分析工具集中的反距离加权技术创建的（ArcMap 软件;Environmental Systems Research Institute Inc. （ESRI）， Redlands， CA， USA） 比较蚊子的地理分布。为了进行统计分析，使用以下公式计算 MIR 以比较感染率： MIR = 阳性蚊子池数/检测× 1000 只蚊子总数。
结果
蚊子种群监测
2017 年至 2022 年 3 月至 11 月期间，在韩国 15 个地区共收集了 1,102,031 只蚊子，代表两个亚科、九个属和 30 多个物种（表 1 和表 2）。最常见的蚊子种类是伊蚊（34.2%，376,791/1,102,031，TI = 31.2），其次是按蚊属（20.1%，221,099/1,102,031，TI = 18.3），库蚊（17.9%，196,800/1,102,031，TI = 16.3），三鼻库蚊（13.4%，147,789/1,102,031，TI = 12.2）。其他种类的蚊子只占所收集到的蚊子总数的 5% 以下（表 1）。
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表 1. 2017-2022 年从大韩民国收集的蚊子物种的地理分布。
https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013258.t001
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表 2. 2017 年至 2022 年在韩国收集的研究中测试的蚊子种类、蚊子数量和水池摘要。
https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013258.t002
分析了韩国主要库蚊物种（称为 JEV 载体）的地理分布 [13]。地理分析显示，Cx. tritaeniorhynchus 主要分布在釜山 （43.3%， 63,953/147,789） 和全罗南道 （39.2%， 57,925/147,789）。Cx. pipiens 复合体主要收集于仁川 （16.2%， 31,855/196,800）、大邱 （14.3%， 28,152/196,800） 和光州 （12.6%， 24,881/196,800）。东韩卷曲在庆尚北道 （36.5%， 2,432/6,666） 最普遍，其次是忠清南道 （20.0%， 1,336/6,666） 和忠北道 （20.0%， 1,203/6,666）。（表 1 和图 1）。在三种库蚊物种中观察到季节性波动。Cx. tritaeniorhynchus 和 Cx. pipiens 复合体的种群数量在 6 月急剧增加（分别增加约 21 倍、4.3 倍），而 Cx. orientalis 在 4 月出现显著增加（约 13.3 倍）。Cx. tritaeniorhynchus 的数量在 8 月最高，而 Cx. pipiens 复合体和 Cx. orientalis 的数量都在 7 月达到峰值。此外，Cx. pipiens 复合体在 8 月后下降，而 Cx. tritaeniorhynchus 和 Cx. orientalis 在 9 月后开始下降（表 2 和 S1 图）。从 2017 年到 2022 年，Cx. tritaeniorhynchus 主要在釜山和全罗南道收集。2017 年，Cx. pipiens 复合体主要收集于大邱和全罗南道，而 2018 年至 2021 年在仁川和 2022 年在光州最丰富。2017 年至 2022 年，除 2020 年外，庆尚北道主要收集了侧方蚜虫（S2 图）。
蚊子体内乙型肝炎病毒的检测
在 2017 年至 2022 年期间从 15 个地区收集的 1,102,031 只蚊子中，有 49 个蚊子的 JEV 检测呈阳性，MIR 为 0.07（49 个阳性蚊池/736,243 只蚊子）（表 3）。具体来说，4,096 个三侧曲霉池中的 18 个（MIR = 0.14;18 个池/132,336 只蚊子）、9,517 个曲池中的 19 个（MIR = 0.11;19 个池/171,089 只蚊子）和 1,200 个东方曲棍球池中的 8 个（MIR = 1.34;8 个池/5,981 只蚊子）是 JEV 阳性。此外，3,264 个白纹伊蚊池中的两个（MIR = 0.05;2 个池/40,767 只蚊子）和 9,861 个白纹伊蚊池中的两个（MIR = 0.01;两个池/296,087 只蚊子）的 JEV 检测呈阳性。
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表 3. 2017 年至 2022 年期间在韩国收集的不同蚊子物种中检测到的 JEV 摘要。
https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013258.t003
2017 年检测到的 JEV 阳性池数量最多（24 个池），而 2020 年和 2022 年记录的池数最低（各 3 个池）（表 3）。MIR 在 2017 年最高（MIR = 0.10,24 个水池/234,755 只蚊子），在 2020 年最低（MIR = 0.03,3 个水池/85,903 只蚊子）。在 49 个 JEV 阳性混合体中，Cx. pipiens 复合体的检出率最高 （19/49），其次是 Cx. tritaeniorhynchus （18/49） 和 Cx. orientalis （8/49） （表 4）。值得注意的是，除 2020 年外，Cx. pipiens 复合体每年的 JEV 检测呈阳性，而 Cx. tritaeniorhynchus 仅在 2017-2018 年被检测为阳性。自 2018 年以来，东方锥虫一直对 JEV 呈阳性反应。
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表 4. 检测和鉴定蚊子池中的 JEV 基因型。
https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0013258.t004
韩国 JEV 基因型的变化
在 JEV 阳性样本中，只有那些成功获得序列的样本被纳入系统发育分析。为避免冗余，当多个样本来自相同的蚊子种类和基因型时，选择代表性序列。总共使用了 20 个序列，使用 NS5 基因的短序列构建了系统发育树。这 20 个序列的相应 GenBank 入藏号为 PQ121414–PQ121433。这些 JEV 菌株和相关菌株之间的进化关系是通过基于 NS5 基因构建邻居连接树来推断的（图 2）。西尼罗河病毒被用作外群。韩国 JEV 菌株分为三个不同的簇：GI、GIII 和 GV。具体而言，在 Cx. tritaeniorhynchus 中检测到 11 个 GI 和 7 个 GIII，在 Cx. pipiens 复合体中检测到 4 个 GIII 和 15 个 GV，在 Cx. orientalis 中检测到 8 个 GV，在 Ae 中检测到 2 个 GIII。Albopictus 和 GIII 在 Ae. vexans 中检测到一次。
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图 2. 使用 NS5 基因核苷酸序列同源性的 JEV 菌株（突出显示）与选定的 JEV 参考菌株的系统发育关系。
该树是由邻居加入方法生成的。西尼罗河病毒（GenBank 登录号KY711339） 的 Orthoflavivirus 属的一个密切相关的成员被用作外群。每个分支上方指示了 1,000 个重复的 Bootstrap 置信限。节点处的数字表示基于 1000 个重新采样数据集的引导百分比（超过 50%）。比例尺显示每个位点的核苷酸替换数。
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2017 年，在 24 个阳性池中，13 个为 GIII，10 个为 GI，1 个为 GV。2018 年，分别在 1 个和 5 个池中检测到 GI 和 GV。Ian 2019 、 GIII 和 GV 分别在 1 个和 7 个池中发现。从 2020 年到 2022 年，仅检测到 GV，2020 年有 3 个池检测呈阳性，2021 年和 2022 年有 5 个池检测呈阳性（表 4）。这些结果表明，JEV 的基因型 V 已在韩国占据主导地位。除了传统的 Cx. tritaeniorhynchus 媒介外，其他库蚊属蚊子甚至伊蚊也可以作为 JEV 的媒介。
讨论
蚊子监测是了解物种分布、感染率、传播病毒基因型和为疾病控制策略提供信息的关键工具。本研究为 2017 年至 2022 年韩国日本脑炎病毒 （JEV） 感染蚊子物种的密度和多样性提供了有价值的见解。
与蚊媒疾病相关的主要蚊子种类包括 Cx. pipiens 复合体 （17.9%）、Cx. tritaeniorhynchus （13.4%）、Ae. albopictus （4.0%） 和Cx. orientalis （0.6%）。值得注意的是，在 2017 年，Cx. tritaeniorhynchus 是最普遍的物种，但从 2018 年开始，Cx. pipiens 复合体占主导地位（S1 图）。已知Cx. pipiens复合体不仅传播JEV，还传播西尼罗河病毒和寨卡病毒[12,27–31]。我们观察到 Cx. tritaeniorhynchus 主要局限于南部地区，而 Cx. pipiens 复合体遍布全国，Cx. orientalis 集中在中部地区。此外，Cx. tritaeniorhynchus 和 Cx. pipiens 复合体主要在每年的 5 —8 月收集，而 Cx. orientalis 在 7 月达到高峰，到 8 月下降（表 2 和 S1 图）。我们的研究证实，尽管 Cx. orientalis 的活跃期较短，但与其他媒介相比，其 JEV 阳性率更高 （TI = 3.0，MIR = 1.34）。这表明 Cx. orientalis 在 JEV 传播中的作用值得进一步研究。
虽然三叶草（Cx. tritaeniorhynchus）仍然是韩国和其他亚洲国家的主要乙型脑炎病毒媒介[11,32,33]，但其他物种，包括螨虫、蛤蜊复合体、伊蚊属和按蚊属已被确定为次要媒介，导致乙型肝炎病毒在人类中传播的风险增加[1,12,13,24,34].这些次级媒介可能在 JEV 维持中发挥关键作用，尤其是在 Cx. tritaeniorhynchus 种群相对不占主导地位的城市和城郊环境中。在我们的研究中，我们在 49 个池中检测到 JEV，包括 Cx. tritaeniorhynchus （MIR = 0.14）、Cx. pipiens 复合体 （0.11）、Cx. orientalis （1.34） 和伊蚊属 （0.03）。值得注意的是，Cx. orientalis 的 MIR 显著高于主要媒介，表明它们在 JEV 传播中的作用可能被低估了。这突出了不同蚊子物种在韩国 JEV 传播中的潜在作用，证实了之前的研究报道了在东亚各个地区的 Cx. pipiens、Ae. vexans 和 Cx. bitaeniorhynchus 等物种中分离或检测到 JEV [1,12,25,42].鉴于这些次级媒介对不同生态条件的适应性，它们在 JEV 传播中的参与在以前可能被低估了。此外，最近气候和土地利用模式的变化可能促进了这些媒介的扩张，从而可能增加 JEV 爆发的风险。这些发现强调了全面病媒监测和有针对性的控制策略的必要性，以减轻 JEV 在不同生态环境中传播的风险。在研究期间，JEV 的传播不仅限于韩国，而且在 2016 年至 2018 年期间，日本、泰国、菲律宾和印度尼西亚等东亚邻国也持续报道了 JEV 的传播，这支持了该病毒仍然在区域流行的观点 [43]。
对从受感染蚊子中分离的 JEV NS5 基因序列的系统发育分析显示，主要基因型发生了变化，从 GIII 转变为 GI，最近又转变为基因型 V（表 4）。从历史上看，直到 1990 年代，JEV 基因型 III 在人类病例中最常见，但在过去三十年中，在韩国、中国和日本等地区，优势基因型已转移到胃肠道 [21,22]。最近，JEV GV已经出现，特别是在中国和韩国的人类病例中[6,35]。在韩国，JEV GV于2015年和2018年首次在人类脑脊液样本中检测到[6,24]。自2010年在库蚊中首次检测到JEV GV以来，在韩国的蚊子物种中一直检测到GI和GV[8,12,14,36]。我们的研究结果与在蚊子监测期间观察到的基因型分布变化一致。
这项研究的优势在于其跨多个地区和多年的全面监测，为了解 JEV 动态提供了强大的数据集。我们承认在我们的研究中可能存在抽样偏差，这可能受到当地环境因素、陷阱放置和蚊子数量时间变化的影响。虽然我们通过使用标准化诱捕方案在多个地区和年份进行监测来努力减少这些偏差，但某些地区或时间段可能没有得到充分代表。在解释研究结果时应考虑这一局限性，因为它可能会影响我们结果的普遍性。
在这项研究中，我们发现 Cx. pipiens 复合体和 Cx. orientalis 主要携带 JEV GV，而 Cx. tritaeniorhynchus 主要携带 GI 和 GIII （表 4）。值得注意的是，2012 年和 2020 年从 Cx. pipiens 蚊子中分离出的所有 JEV 菌株都是 GV [14,36]。然而，Cx. tritaeniorhynchus 被认为是主要的 JEV 媒介，GV 在 Cx. pipiens 复合体和 Cx. orientalis 蚊子中的出现突出了媒介动力学的可能转变。然而，这并不能直接证明它们作为 JEV 载体的能力。研究表明，欧洲的 Cx. pipiens 种群能够在实验室环境中传播 JEV GIII 和 GV [27]。观察到的基因型变化凸显了持续监测 JEV 基因型和蚊媒的必要性。在过去十年中，亚洲主要的 JEV 基因型已从 GI 和 GIII 转变为更多样化的基因型。最近的报告表明，GV 可能在亚洲部分地区重新出现，这引发了对其更广泛的公共卫生影响的质疑。在中国 [8]、韩国 [12] 以及最近在中国西藏 [44] 等地区的蚊子和/或人类病例中检测到 GV 菌株。尽管基因型 I （GI） 仍然是大多数亚洲国家的主要流行基因型，但 GV 的零星检测和不断扩大的地理分布凸显了加强整个区域监测的必要性。GV 的重新出现可能归因于病媒移动增加、环境变化和蚊子种类易感性不断进化等因素，这凸显了调整公共卫生策略以监测和控制潜在爆发的重要性。
韩国目前使用的 JEV 疫苗基于 GIII。尽管 GV 已经出现并在亚洲广泛传播，但评估现有疫苗对 GV 菌株保护效果的研究仍然有限 [13]。此外，日本脑炎患者的病毒血症持续时间较短，因此难以确定感染基因型，过去10年韩国仅报道了3例日本脑炎病毒GV病例[24,37,38]。如果 GV 继续在亚洲扩张，其公共卫生影响将在很大程度上取决于疫苗功效和病媒控制措施。目前的 JEV 疫苗主要基于 GI 和 GIII 毒株开发，可能对 GV 提供一些交叉保护;然而，需要进一步的研究来评估这种免疫力的程度和持久性[39–41]。开发提供广泛保护的疫苗，包括覆盖 GV，对于减轻这一公共卫生威胁至关重要。日本和台湾等拥有强大 JEV 疫苗接种计划的国家可能为潜在的疫情做好了更好的准备，而疫苗覆盖率较低的地区可能面临更高的传播风险。
持续监测病媒蚊子物种对于追踪新出现的 JEV 基因型和减轻对人类健康的风险至关重要。这项研究的数据可用于确定导致 JEV 在韩国传播的关键载体。未来的研究应侧重于验证各种蚊子物种对新 JEV 基因型的媒介能力，并开发对新出现的毒株有效的疫苗。此外，将监测范围扩大到更多地区和蚊子种类，将提供更全面的 JEV 流行病学信息。
支持信息
2017 年至 2022 年韩国 Cx. tritaeniorhynchus、Cx. pipiens 复合体和 Cx. orientalis 的月度和年度分布。
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S1 图 2017 年至 2022 年韩国 Cx. tritaeniorhynchus、Cx. pipiens 复合体和 Cx. orientalis 的月度和年度分布。
（a） 月度分布 （b） 年度分布趋势。
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S2 图 2017 年至 2022 年三种库蚊种群的年变化。
（a） Cx. tritaeniorhynchus， （b） Cx. pipiens complex， 和 （c） Cx. orientalis.
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（DOCX）
确认
我们感谢气候变化病媒监测区域中心的 16 名工作人员在全国范围内收集样本，包括 Soon-Won Lee（江原道健康与环境研究所）、Eun-Joo Lim（江原道健康与环境研究所）、Woan Lee（江原道健康与环境研究所）、Bo-Young Jeon（延世大学）、Tong Soo Kim（仁荷大学）、 Hyung-Wook Kwon （仁川大学）， Hoonbok Yi （首尔女子大学）， Doo-Hyung Lee （嘉泉大学）， Gil-Hah Kim （忠北大学）， Sunghoon Jung （忠南大学）， Yong Seok Lee （顺中香大学）， Chul Park （光州健康大学）， Hyeon-Je Song （光州健康大学）， Yeon Soo Han （全南国立大学）， Pil Seung Kwon （元光健康科学大学）， Hyun Cheol Lim （全罗南道卫生研究所 & 环境）、Doo-Young Jeon（全罗南道健康与环境研究所）、Gyeong Cheol Choi（全罗南道健康与环境研究所）、Mi-Yeong Shin（全罗南道健康与环境研究所）、Ohseok Kwon（庆北大学）、Young Ho Kim（庆北大学）、Dong-Kyu Lee（高信大学）、Kwang Shik Choi（庆北大学）和Young Min Yun（济州国立大学）。
引用
1.Su C-L， Yang C-F， Teng H-J， Lu L-C， Lin C， Tsai K-H， et al.2005-2012 年台湾蚊子日本脑炎病毒的分子流行病学。PLoS Negl Trop Dis. 2014 年;8（10）：e3122。PMID：25275652
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